Рівень неестерифікованих жирних кислот у тканинах черевця та продуктивні ознаки бджіл за згодовування різної кількості лляної олії
DOI:
https://doi.org/10.32636/01308521.2020-(67)-2-17Ключові слова:
медоносні бджоли, кормова добавка, лляна олія, жирні кислоти, відтворна здатність маток, медова продуктивність бджілАнотація
Метою досліджень є встановлення зв’язку між складом неестерифікованих жирних кислот у тканинах черевця та продуктивними ознаками медоносних бджіл за різної кількості лляної олії в кормовій добавці.
Експериментальну роботу проведено у весняно-літній період на клінічно здорових медоносних бджолах карпатської породи. Було сформовано 3 групи бджолиних сімей (по 3 бджолосім’ї в кожній), відібраних за принципом аналогів. Бджолині сім’ї контрольної групи впродовж 36 діб щотижня отримували кормову добавку, яка складалася з 100 г знежиреного борошна з бобів натуральної сої та 100 г цукрового сиропу (співвідношення цукру до води 1:1). Бджолині сім’ї І і ІІ дослідних груп додатково до цієї кормової добавки отримували лляну олію в кількості відповідно 10 і 20 г/бджолосім’ю/тиждень. Під час проведення досліду контролювали відтворну здатність маток і медову продуктивність робочих бджіл. Після завершення підгодівлі для лабораторних досліджень було відібрано зразки тканин медоносних бджіл. У тканинах черевця методом газо-рідинної хроматографії визначали вміст неестерифікованих жирних кислот.
Встановлено, що внаслідок додавання до кормової добавки, яка складається зі знежиреного соєвого борошна та цукрового сиропу, лляної олії в кількості 10 і 20 г в ній дозозалежно зростає вміст насичених, мононенасичених і особливо поліненасичених жирних кислот як у складі жирних кислот загальних ліпідів, так і в складі неестерифікованих жирних кислот. Згодовування кормової добавки, збагаченої лляною олією, приводить до зменшення концентрації неестерифікованих насичених з парною і непарною кількістю атомів Карбону в ланцюгу, мононенасичених жирних кислот родин ω-7 і ω-9 та поліненасичених жирних кислот родини ω-6 у тканинах черевця медоносних бджіл І та ІІ дослідних груп, водночас у наведених вище бджіл зростає вміст неестерифікованих жирних кислот родини ω-3 та співвідношення концентрації неестерифікованих поліненасичених жирних кислот родини ω-3 до поліненасичених жирних кислот родини ω-6. У кінцевому підсумку у бджолиних маток згадуваних груп зростає яйцекладка, а в робочих бджіл – медова продуктивність.
Посилання
1. Кількісні хроматографічні методи визначення окремих ліпідів і жирних кислот у біологічному матеріалі : метод. посіб. / Й. Ф. Рівіс та ін. 2-ге вид., уточн. та доп. Львів : СПОЛОМ, 2017. 160 с.
2. Лаврехин Ф. А., Панкова С. В. Биология медоносной пчелы. 3-е изд., перераб. и доп. Москва : Колос, 1983. 303 с.
3. Abedi E., Sahari M. A. Long-chain polyunsaturated fatty acid sources and evaluation of their nutritional and functional properties. Food Sci. Nutr. 2014. Vol. 2, Is. 5. P. 443–463.
4. AL-Kahtani S. N. Fatty acids and B vitamins contents in honey bee collected pollen in relation to botanical origin. Scientific Journal of King Faisal University (Basic and Applied Sciences). 2017. Vol. 18, № 2. Р. 41–48.
5. Antibacterial immune competence of honey bees (Apis mellifera) is adapted to different life stages and environmental risks / H. Gӓtschenberger et al. PLoS One. 2013. Vol. 8, Is. 6. DOI: 10.1371/journal.pone.0066415.
6. A pollen fatty acid enhances learning and survival in bumblebees / F. Muth et al. Behavioral Ecology. 2018. Vol. 29, Is. 6. P. 1371–1379.
7. Arien Y., Dag A., Shafir S. Omega-6:3 ratio more than absolute lipid level in diet affects associative learning in honey bees. Front. Psychol. 2018. Vol. 9. Р. 1–8.
8. Arrese E. L., Soulages J. L. Insect fat body: energy, metabolism, and regulation. Annu. Rev. Entomol. 2010. Vol. 55. P. 207–225.
9. Brodschneider R., Crailsheim K. Nutrition and health in honey bees. Apidologie. 2010. Vol. 41, Is. 3. P. 278–294.
10. Cohen A. C. Insect diets: science and technology. Boca Raton, Florida, USA : CRC Press, 2004. 324 p.
11. Comparative transcriptome analysis on the synthesis pathway of honey bee (Apis mellifera) mandibular gland secretions / Y. Wu et al. Scientific Reports. 2017. Vol. 7 (1), 4530. DOI: 10.1038/s41598-017-04879-z.
12. Couture P., Hulbert A. J. Membrane fatty acid composition is related to body mass in mammals. The Journal of Membrane Biology. 1995. Vol. 148, Is. 1. Р. 27–39.
13. Effect of industry on the content of fatty acids in the tissues of the honey-bee head / V. Y. Vishchur et al. Ukrainian Journal of Ecology. 2019. Vol. 9, № 3. P. 174–179.
14. Fat metabolism in insects / L. E. Canavoso et al. Annual Review of Nutrition. 2001. Vol. 21. P. 23–46.
15. Fatty acid and proximate composition of bee bread / M. Kaplan et al. Food Technol. Biotechnol. 2016. Vol. 54, № 4. P. 497–504.
16. Giri S., Dillon M. E. Seasonal and altitudial variation in fatty acid composition of native bees. UW NPS Annu. Rep. 2012. Vol. 35, Is. 1. P. 23–30.
17. Gooley Z. C., Gooley A. C. Temporal variation of fatty acid composition and pesticides in honeybees Apis mellifera and beebread. bioRxiv. 2019. DOI: https://doi.org/10.1101/572149.
18. Honey bees dance faster for pollen that complements colony essential fatty acid deficiency / S. Zarchin et al. Behavioral Ecology and Sociobiology. 2017. Vol. 71, Is. 12. DOI: https://doi.org/10.1007/s00265-017-2394-1.
19. Hulbert A. J. Metabolism and longevity: Is there a role for membrane fatty acids? Integrative and Comparative Biology. 2010. Vol. 50, Is. 5. P. 808–817.
20. Hulbert A. J., Abbott S. K. Nutritional ecology of essential fatty acids: an evolutionary perspective. Australian Journal of Zoology. 2011. Vol. 59, № 6. P. 369–379.
21. Hulbert A. J., Kelly M. A., Abbott S. K. Polyunsaturated fats, membrane lipids and animal longevity. Journal of Comparative Physiology B: biochemical, systemic, and environmental physiology. 2014. Vol. 184, Is. 2. P. 149–166.
22. Influence of pollen nutrition on honey bee health: do pollen quality and diversity matter? / G. Di Pasquale et al. PLoS One. 2013. Vol. 8, Is. 8. e72016. DOI: 10.1371/journal.pone.0072016.
23. Lipid storage and mobilization in insects: current status and future directions / E. L. Arrese et al. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 2001. Vol. 31. Р. 7–17.
24. Loidl A., Crailsheim K. Free fatty acids digested from pollen and triolein in the honeybee (Apis mellifera carnica Pollmann) midgut. Journal of Comparative Physiology B. 2001. Vol. 171, Is. 4. P. 313–319.
25. Manning R. Artificial feeding of honeybees based on an understanding of nutritional principles. Animal Production Science. 2016. Vol. 58, № 4. P. 689–703.
26. Nutritional aspects of honey bee-collected pollen and constraints on colony development in the eastern Mediterranean / D. Avni et al. Journal of Insect Physiology. 2014. Vol. 69. P. 65–73.
27. Nutritional effect of alpha-linolenic acid on honey bee colony development (Apis mellifera L.) / L. Ma et al. Journal of Apicultural Science. 2015. Vol. 59, № 2. Р. 63–72.
28. Omega-3 deficiency impairs honey bee learning / Y. Arien et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. Vol. 112, № 51. Р. 15761–15766.
29. Rabiee F., Modaresi M., Gheisari A. The effect to various oleic acid levels on reproductive parameters in queen bee. Der Pharmacia Lettre. 2015. Vol. 7, Is. 12. Р. 326–331.
30. Standard methods for Apis mellifera beeswax research / L. Svečnjak et al. Journal of Apicultural Research. 2019. Vol. 58, Is. 2. P. 1–108.
31. Ziegler R., van Antwerpen R. Lipid uptake by insect oocytes. Insect Biochem. Mol. Biol. 2006. Vol. 36, Is. 4. P. 264–272.
Завантаження
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2020 І. І. САРАНЧУК (Автор)
Ця робота ліцензується відповідно до ліцензії Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
