Продуктивність та гематологічні показники перепілок за дії фітобіотика
DOI:
https://doi.org/10.32636/01308521.2026-(80)-1-16Ключові слова:
перепілки-несучки, фітобіотик, годівля, прирости, забійні якості, кровАнотація
Метою дослідження було визначити вплив фітобіотика на продуктивність та гематологічні показники перепілок. Для досліду було відібрано за методом груп-аналогів 4 групи перепелів «маньчжурської золотистої» породи віком 45 діб по 50 голів у кожній. Дослідним групам додатково до основного раціону згодовували фітобіотичну добавку в різних дозах. Додаткове використання в раціоні перепілок рослинної добавки підвищувало живу масу птиці наприкінці досліду в 4-й групі на 7,3 % (Р ≤ 0,001) порівняно з контролем. За дії фітобіотика середньодобовий приріст перепілок 4-ї групи збільшився на 39,2 % (Р ≤ 0,05), абсолютний – на 40,8 % (Р ≤ 0,001) та відносний – на 9,1 %
(Р ≤ 0,01) відносно контрольного показника. За згодовування рослинної добавки валовий збір яєць у 4-й групі був на 6,7 % більшим, ніж у контролі. Згодовування фітобіотика сприяє збільшенню передзабійної живої маси перепілок 4-ї групи на 8,2 % (Р ≤ 0,01) відносно контрольних даних. Додаткове споживання рослинної добавки підвищує масу непатраної та напівпатраної тушки у 4-й групі на 12,2 % і 15,1 % (Р ≤ 0,01) відповідно проти контрольних значень. За дії фітобіотика маса патраної тушки у
4-й групі була на 13,9 % (Р ≤ 0,01) більшою, ніж у контрольного зразка. Виявлено, що застосування фітобіотика сприяє збільшенню концентрації гемоглобіну в 4-й групі перепілок на
6,9 % (Р ≤ 0,05) та кількості еритроцитів у крові на 20,8 % (Р ≤ 0,01) порівняно з контрольною групою. За згодовування рослинної добавки підвищується концентрація загального білка крові у 4-й групі на 13,6 % (Р ≤ 0,001), глюкози – на 14,3 % та кальцію – на 21,7 % (Р ≤ 0,05) відносно контролю.
Посилання
1. Аннамухаммедова О. О., Аннамухаммедов А. О. Лікарські рослини : навчальний посібник. Житомир : Вид-во ЖДУ ім. І. Франка. 2014. 202 с. https://eprints.zu.edu.ua/14121/1/%D0%9F%D0%BE%D1%81%D1%96%D0%B1%D0%BD%D0%B8%D0%BA_%D0%BB%D1%96%D0%BA%D0%B0%D1%80%D1%81%D1%8C%D0%BA%D1%96.pdf.
2. Ібатуллін І. І., Жукорський О. М. Методологія та організація наукових досліджень у тваринництві. Київ : Аграрна наука. 2017. 328 с.
3. Пітера Л. В., Отченашко В. В. Вплив соняшникового білкового концентрату на інкубаційні якості яєць перепепілок-несучок мʼясного напряму продуктивності. Таврійський науковий вісник. 2023. № 129. С. 215‒223. https://www.tnv-agro.ksauniv.ks.ua/archives/129_2023/27.pdf.
4. Руденко В. М. Математична статистика. К. : Центр учбової літератури. 2012. 304 с. https://shron.org/server/api/core/bitstreams/2eccea83-614c-4d25-806d-41b94700a48b/content.
5. Abdelli N., Solà-Oriol D., Pérez J. F. Phytogenic Feed Additives in Poultry: Achievements, Prospective and Challenges. Animals. 2021. 11 (12), 3471. https://doi.org/10.3390/ani11123471.
6. Alternatives to antibiotics for organic poultry production: types, modes of action and impacts on bird’s health and production / M. E. Abd El-Hack et al. Poultry Science. 2022. 101 (4), 101696. https://doi.org/10.1016/j.psj.2022.101696.
7. Ameliorative effect of aloe vera supplementation in poultry feed / S. Sinha et al. Journal of Animal Research. 2017. Vol. 7 (1), 85. https://indianjournals.com/article/jar-7-1-012.
8. Detection of antibiotic residues in chicken meat from different agro-climatic zones of Chhattisgarh, India by HPLC-PDA and human exposure assessment and risk characterization / C. Chandrakar et al. Food Control. 2023. 148, 109667. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2023.109667.
9. Effect of Echinacea pallida supplementation on the amino acid and fatty acid composition of Pharaoh Quail meat / R. А. Chudak et al. Ukrainian Journal of Ecology. 2020. 10 (2). P. 302‒307. https://doi.org/10.15421/2020_101
10. Effects of ginger extract on laying performance, egg quality, and antioxidant status of laying hens / C. Wen et al. Animals. 2019. 9 (11), 857. https://doi.org/10.3390/ani9110857.
11. Effect of feed with extruded components and phytobiotics on quail / Y. Balji et al. Scientific Horizons. 2024. Vol. 27. No. 9. P. 32‒41. https://doi.org/10.48077/scihor9.2024.32.
12. Effects of olive oil-treated diet and key lime juice-treated drinking water on intake and growth performance of quail / M. M. Rahman et al. Veterinary Integrative Sciences. 2024. 23 (1), e2025022. https://doi.org/10.12982/VIS.2025.022.
13. European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Research and Other Scientific Purposes. European Treaty Series. No. 123. Strasbourg, 18.III.1986. https://rm.coe.int/168007a67b.
14. Gilani S. M. H, Rashid Z., Galani S. Growth performance, intestinal histomorphology, gut microflora and ghrelin gene expression analysis of broiler by supplementing natural growth promoters: a nutrigenomics approach. Saudi Journal of Biological Sciences. 2021. Vol. 28. Issue 6. 3438–3447. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.03.008.
15. Ginger supplementation in quail as a nutritional alternative in egg production and quality / O. P. Núñez-Torres et al. Journal of the Selva Andina Animal Science. 2021. 8 (2). P. 90‒101. https://doi.org/10.36610/j.jsaas.2021.080200090.
16. Growth, carcass criteria, and blood biochemical parameters of growing quails fed Arthrospira platensis as a feed additive / A. Abd E. Hagar et al. Poultry Science. 2023. 102 (12), 103205. https://doi.org/10.1016/j.psj.2023.103205.
17. Impact of using ginger (Zingiber officinale) in laying quail diets on egg production, egg quality and blood parameters / M. M. El-Kashef et al. Egyptian Poultry Science Journal. 2022. 42 (4), 419‒435. https://doi.org/10.21608/EPSJ.2022.278520.
18. Influences of dietary supplementation of ginger powder and frankincense oil on productive performance, blood biochemical parameters, oxidative status and tissues histomorphology of laying Japanese quail / W. M. Dosoky et al. Poultry Science. 2023. 102 (11), 102988. https://doi.org/10.1016/j.psj.2023.102988.
19. Kikusato M. Phytobiotics to improve health and production of broiler chickens: functions beyond the antioxidant activity. Animal Bioscience. 2021. 34. P. 345–353. https://doi.org/10.5713/ab.20.0842.
20. Mohammadi Gheisar M., Kim I. H. Phytobiotics in poultry and swine nutrition – a review. Italian Journal of Animal Science. 2018. Vol. 17. P. 92–99. https://doi.org/10.1080/1828051X.2017.1350120.
21. Nutritional value, phytochemical content, and antioxidant activity of three phytobiotic plants from west Cameroon / S. C. H. Ndomou et al. Journal of the Science of Food and Agriculture. 2021. 3, 100105. https://doi.org/10.1016/j.jafr.2021.100105.
22. Phytobiotic effect of Anacardium occidentale L. leaves powder on performance, carcass traits, and intestinal characteristics in broilers / Y. Martínez et al. Brazilian Journal of Poultry Science. 2021. Vol. 23 (01): eRBCA-2020. https://doi.org/10.1590/1806-9061-2020-1362.
23. Phytogenic feed additives as an alternative to antibiotic growth promoters in broiler chickens / G. R. Murugesan et al. Frontiers in Veterinary Science. 2015. Vol. 2. 21. https://doi.org/10.3389/fvets.2015.00021.
24. Phytobiotics in poultry industry as growth promoters, antimicrobials and immunomodulators-a review / Abd El-Ghany et al. Journal of Agriculture and Food Research. 2020. 10 (4). P. 571–579. https://jwpr.science-line.com/attachments/article/54/JWPR%2010(4)%20571-579,%202020.pdf.
25. Potential of Spirulina platensis as a feed supplement for poultry to enhance growth performance and immune modulation / N. A. El-Shall et al. Frontiers in Immunology. 2023. 14, 1072787. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1072787.
26. Qin S., & Hou D-X. The biofunctions of phytochemicals and their applications in farm animals: The Nrf2/Keap1 system as a target. Engineering. 2017. Vol. 3. Issue 5. 738–752. https://doi.org/10.1016/J.ENG.2017.03.011.
27. Synergistic effects of probiotics and phytobiotics on the intestinal microbiota in young broiler chicken / H. Ren et al. Microorganisms. 2019. 7 (12). 684. https://doi.org/10.3390/microorganisms7120684.
28. The effect of phytogenics on growth traits, blood biochemical and intestinal histology in broiler chickens exposed to Clostridium perfringens challenge / A. M. Abudabos et al. Journal of Applied Animal Research. 2017. 46 (1). 691‒695. https://doi.org/10.1080/09712119.2017.1383258.
29. The use of cold pressed oils as eco-friendly alternatives for antibiotics in high and low-CP diets of laying Japanese quail / M. Alagawany et al. Animal Biotechnology. 2022. 33 (5). 816‒823. https://doi.org/10.1080/10495398.2020.1837846.
30. Use of phytogenic feed additives to enhance animal production and welfare / W. Windisch et al. Journal of Animal Science. 2008. 86 (14). P. 140–148. https://doi.org/10.2527/jas.2007-0459.
Завантаження
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2026 Роман ЧУДАК, Ярослав ЛЕБІДЬ, Юлія ПОБЕРЕЖЕЦЬ (Автор)
Ця робота ліцензується відповідно до ліцензії Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
