Use of phytobiotics in calf feeding and their influence on the formation of rumen digestion and resistance
DOI:
https://doi.org/10.32636/01308521.2023-(74)-2-13Keywords:
calves, compound feed, phytobiotics, ruminal metabolism, live weight, growth and development, immunoglobulins, resistanceAbstract
The data are given on the use of the phytobiotic additive Activio, created on the basis of extracts of essential oils of chili pepper, cinnamon and oregano, the use of which with colostrum, contributes to the formation of own immunity and the intensive population of the gastrointestinal tract with useful microflora. It was investigated that the intensive growth of calves was facilitated by feeding the Activio in the amount of 70 and 100 g/t of starter compound feed. In particular, the calves of the experimental group, which received a mixture of essential oil extracts with compound feed in all age periods, had higher live weight gains by 4.46–10.22 % compared to the calves of the control group. On average, over the entire period of the experiment (from 30 to 270 days of age), this advantage amounted to 8.97 %. The increase in live weight gain was associated with the intensification of metabolic processes. It was established that the content of total proteins in the blood serum of calves of the experimental group was higher by 8.00–9.81 % compared to the control. Along with this, an increase in the level of immunoglobulins was noted from 1.31 to 33.12 g/l, i.e. a 25-fold increase, while in the control group – 18-fold increase. It has been studied that during the first 30 days observed an intensive development of cicatricial digestion due to an increase in the content of bacteria and ciliates. However, compared to the control, their number in the experimental group was higher by 16.20 and 10.73 %, respectively. An increase in the level of total and protein protein in the rumen content of calves of both groups was noted with age. In the experimental group, this increase compared to the control amounted to 10.29 and 9.38 %, respectively. Research on the enzymatic activity of rumen microorganisms indicates an increase in amylolytic, proteolytic, and cellulolytic activity in calves of the experimental group at 30 days of age, respectively, by 31.8; 17.3 and 17.3 % compared to control analogues.
References
1. Бомко В. С., Сиваченко Є. В., Сметаніна О. В. Корми і кормові добавки та ефективність їх використання в годівлі тварин : навч. посібник. Біла Церква, 2023. 225 с.
2. Возна О. Е., Заяць О. І., Винниченко А. П. Метаболічні процеси в рубці та продуктивний ефект у телят за дії йонофору. Наук. вісник ЛНУВМБТ імені С. З. Ґжицького. 2016. Т. 18. № 2 (67). С. 39–43.
3. Грищенко В. А. Закономірності формування колострального імунітету в телят, прогнозування імунодефіциту. Біоресурси і природокористування. Ветеринарія. 2015. Т. 6. № 3–4. С. 67–71.
4. Гунчак А. В., Гунчак В. М., Ратич І. Б. Біологічний ефект рослиних екстрактів в організмі птиці. Наук. вісник ЛНУВМБТ імені С. З. Ґжицького. 2015. Т. 17(3). С. 19–31.
5. Кирилів Б. Я., Гунчак А. В., Сірко Я. М. Продуктивність та якість продукції перепелівництва за впливу біологічно активних добавок. Наук. вісник ЛНУВМБТ імені С. З. Ґжицького. 2017. Т. 19. № 74. С. 229–234.
6. Косенко Ю. М., Остапів Н. В., Зарума Л. Є. Основні принципи раціонального використання протимікробних препаратів у ветеринарній медицині. НТБ ІБТ і ДНДКІ ветпрепаратів та кормових добавок. 2015. Вип. 16. № 1. С. 236–240.
7. Коцюмбас І. Я., Гунчак В. М., Стецько Т. І. Проблеми використання антимікробних препаратів для стимулювання росту продуктивних тварин та альтернативи їх застосуванню. НТБ ІБТ і ДНДКІ ветпрепаратів та кормових добавок. 2013. Вип. 14. № 3–4. С. 381–389.
8. Лабораторні методи досліджень у біології, тваринництві та ветеринарній медицині : довідник / В. В. Влізло і ін. ; за ред. В. В. Влізла. Львів, 2012. 759 с.
9. Палапа Н. В., Пронь Н. Б., Устименко О. В. Особливості використання лікарських рослин у тваринництві. Збалансоване природокористування. 2016. № 2. С. 47–51.
10. Панікар І. І. Гуморальний імунітет поросят неонатального періоду і вплив на нього молозива і молока. Наук. вісник ЛНУВМБТ імені С. З. Ґжицького. 2014. Т. 16. № 3 (60), ч. 2. С. 231–241.
11. Спосіб стимулювання росту та підвищення якості продукції курчат-бройлерів: пат. 113578 Україна : А23К 10/30, А23К 50/70 / Т. Я. Прудиус, Я. І. Кирилів. № u 2016 06465 ; заявл. 13.06.2016 ; опубл. 10.02.2017, Бюл. № 3.
12. Спосіб підвищення продуктивності та покращення якості яєць гусей: пат. 118380 Україна : А23К 50/70, А23К 10/30 / Т. Я. Прудиус, Я. І. Кирилів. № u 2017 00066 ; заявл. 03.01.2017 ; опубл. 10.08.2017, Бюл. № 15.
13. Середа А. В., Глущенко Л. А., Грищук А. В. Перспективи використання лікарських рослин і фітопрепаратів у тваринництві. Ветеринарна медицина України. 2012. № 11. С. 40–41.
14. Скляров О. Я., Косий Є. Р., Склярова В. О. Зміни іонного балансу в органах травної системи при стресі і при застосуванні олії з амаранту. Експериментальна та клінічна фізіологія та біохімія. 1997. Т. 2. С. 30–37.
15. Томчук В. А. Ентеросорбенти, їх властивості та застосування. Біологія тварин. 2014. Т.16, № 1. С.148159.
16. ТУ У 10.9 – 00492990– 014:2016. Біологічно активна добавка “АКТИВІО”. Львів, 2016. 20 c.
17. Adewole D. I., Kim I. H., Nyachoti C. M. Gut health of pigs: challenge models and response criteria with a critical analysis of the effectiveness of selected feed additives. Asian-Australias J. Anim. Sci. 2016. 29. 909–924.
18. Adhikari P. A., Kim W. K. Overview of prebiotics and Probiotics: focus on performance, gut health and immunity – a review. Annals of Animal Science. 2017. 17(4), 949–966. DOI: 10.1515/aoas-2016-0092.
19. Ahmed S. T., Hoon J., Mun H. Evaluation of Lactobacillus and Bacillus – based probiotics as alternatives to antibiotics in enteric microbial challenged weaned piglets African J. of Microbiology Research. 2014. 8 (1). 96–104.
20. Burt S. Essential oils: Their antibacterial properties and potential applications in foods. Int. J. Food Microbiol. 2004. 94. 223–253.
21. Daouk R., Dagher S., Sattout E. Antifungal activity of the essential of Origanum syriacum L. J. of Food Protection. 1995. 58. 1147–1149.
22. Dietary use of Rosmarinus officinalis and Thymus vulgaris as anticoccidial alternatives in poultry / R. A. Lahlou et al. 2021. Animal Feed Science and Technology. 273. doi:10.1016/j.anifeedsci.2021.114826.
23. Fouhse J. M., Zijlstra R. T., Willing B. P. The role of gut microbiota in the health and disease of pigs. Animal Frontiers. 2016. 6. 3. 30–36.
24. Gonzalez L.M., Moeser A. J., Blikslager A. T. Porcine models of digestive disease: the future of large animal translational research. Translational Research. 2015. 166 (1). P. 12–27.
25. Growth Performance, Digestive Efficiency, and Meat Quality of Two Commercial Crossbred Rabbits Fed Diets Differing in Energy and Protein Levels / Birolo M. et al. Animals. 2022. 12(18). 2427. doi.org/10.3390/ani12182427.
26. Hammer, K.A., Carson, C.F. and Riley, T.V. Antimicrobial activity of essential oils and other plant extracts. J. Appl. Microbiol. 1999. 86. 985–990.
27. Influence of preparations of “Activo” and “Propoul” on composition of caecums microflora in Pharaon breed quails and their productivity / О. М. Stefanyshyn et al. 2017. Animal Biology, 19 (3), 107–114. http://doi.org/10.15407/animbiol19.03.107.
28. Jakubowska M., Karamucki T. The effect of feed supplementation with Salvia officinalis, Thymus vulgaris, and Rosmarinus officinalis on the quality of quail meat. 2021. Anim. Sci. Papers & Reports. 39(4). 393–405.
29. Lahlou, R. A., Bounechada, M., Mohammedi, A., Silva, L. R., & Alves, G. (2021). Dietary use of Rosmarinus officinalis and Thymus vulgaris as anticoccidial alternatives in poultry, Animal Feed Science and Technology, 273. doi:10.1016/j.anifeedsci.2021.114826.
30. Oussalah M., Caillet S., Saucier L. Inhibitory effects of selected plant essential oils on the growth of four pathogenic bacteria: E. coli O157:H7, Salmonella Typhimurium, Staphylococcus aureus and Listeria monocytogenes. Food Contr. 2007. 18. 414–420.
31. Pastured organic rabbit farming: growth of rabbits under different herbage allowance and quality / Legendre, H. Et al. Annual Meeting of the European Federation of Animal Science (EAAP). 2018. Dubrovnik, Croatia, 69, 705. ⟨hal-02736060⟩.
32. Poole K. Mechanisms of bacterial biocide and antibiotic resistance. J. Appl. Microbiol. 2002. 92. 55–64.
33. Prabuseenivasan S., Jayakumar M. Ignacimuthu S. In vitro antibacterial activity of some plant essential oils. BMC Complement Altern. Med. 2006. 6.
34. Puvača N., Tufarelli V., Giannenas I. Essential Oils in Broiler Chicken Production, Immunity and Meat Quality : Review of Thymus vulgaris, Origanum vulgare and Rosmarinus officinalis. 2022. Agriculture. 12 (6). 874. http://dx.doi.org/10.3390/agriculture12060874.
35. Skandamis P., Tsigarida E., Nychas G. Ecophysiological attributes of Salmonella typhimurium in liquid culture and within gelatin gel with or without the addition of oregano essential oil. World J. of Microbiology and Biotechnology. 2000. 16. 31–35.
35. Sung Y., Kim W. Intestinal challenge with enterotoxigenic Escherichia coli in pigs, and nutritional intervention to prevent postweaning diarrhea. Animal Nutrition. 2017. Vol. 3 (4). P. 322–330.
Downloads
Published
Issue
Section
License
Copyright (c) 2023 Ярослав КИРИЛІВ, Наталія ФЕДАК, Мирон ПЕТРИШИН, Тарас ПРУДЕУС (Автор)
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
